Back to Home Page of CD3WD Project or Back to list of CD3WD Publications

Continué

Table des matières - Précédente - Suivante

DATE: 09.10.79
NUMEROTATION CEE: 79/869

DIRECTIVE DU CONSEIL RELATIVE AUX METHODES DE MESURE ET A LA FREQUENCE DES ECHANTILLONNAGES ET DE L'ANALYSE DES EAUX SUPERFICIELLES DESTINEES A LA PRODUCTION D'EAU DE CONSOMMATION HUMAINE DANS LES ETATS MEMBRES

Directives de modification et d’adaptation:

PARTIES CONTRACTANTES

Communautés européennes

OBJET IMMEDIAT

Cause de pollution:
Bien à protéger/
milieu récepteur:
Eaux superficielles, eau potable
Zone à protéger:

Intérêt pour les EIE: La présente directive définit les méthodes de mesure de référence et d'analyse à appliquer pour la détermination des 46 paramètres spécifiés dans la directive 75/440/CEE.

REMARQUES

La directive 75/440/CEE fixe en fonction de 46 paramètres les normes de qualité applicables aux eaux superficielles destinées à la production d'eau alimentaire.

REFERENCE

Source de données consultée: Droit de l’Environnement des Communautés européennes (DECE, 1988)

INFORMATIONS CONNEXES

Annexe i

Methodes de mesure de reference en vue de la determination des valeurs I et/ou G des parametres de la directive 75/440/CEE

(A) (B)   (C) (D) (E) (F) (G)
  Paramètres   Limite de détection Précision
+ -
Exac-titude
+ -
Méthode de mesure de référence (1) Matériaux recomman-dés pour le récipient
1 pH value Unité pH - 0,1 0,2 - Electrométrie
La mesure s'effectue immédiatement in situ en même temps que l'échantillonnage sans traitement préalable de l'échantillon
 
2 Coloration (après filtration simple) mg Pt/l 5 19% 20% - Filtration sur membrane de fibres de verre
Méthode photométrique, aux étalons de l'échelle platine-cobalt
 
3 Matières totales en suspension mg/l - 5% 10% - Filtration sur membrane filtrante (0,45 µm) ,
Séchage à 105°C et pesée
- Centrifugation (au moins 5 mn, accélération moyenne 2800 à 3200 g) , séchage à 105°C et pesée
 
4 Température °C - 0,5 1 - Thermométrie
La mesure s'effectue in situ en même temps que l'échantillonnage sans traitement préalable de l'échantillon
 
5 Conductivité à 20°C *S/cm - 5% 10% - Electrométrie  
6 Odeur Facteur de dilu-tion à 25°C - - - - Par dilutions successives Verre
7 Nitrates mg/l NO3 2 10% 20% - Spectrophotométrie d'absorption moléculaire  
8 Fluorures mg/l F 0,05 10% 20% - Spectrophotométrie d'absorption moléculaire, si nécessaire après distillation
- Electrodes ioniques spécifiques
 
9 Chlore organique total extractible mg/l Cl          
10 Fer (dissous) mg/l Fe 0,02 10% 20% - Spectrométrie d'absorption atomique après filtration sur membrane filtrante (0,45 µm)
Spectrophotométrie d'absorption moléculaire après filtration sur membrane filtrante (0,45 µm)
 
11 Manganèse mg/l Mn 0,01 (2)
0,02 (3)
10%
10%
20%
20%
- Spectrométrie d'absorption atomique
- Spectrométrie d'absorption atomique
- Spectrophotométrie d'absorption moléculaire
 
12 Cuivre (10) mg/l Cu 0,005
0,02 (4)
10%
10%
20%
20%
- Spectrométrie d'absorption atomique
Polarographie
- Spectrométrie d'absorption atomique
- Spectrophotométrie d'absorption moléculaire
Polarographie
 
13 Zinc (10) mg/l Zn 0,01 (2)
0,02
10%
10%
20%
20%
- Spectrométrie d'absorption atomique
- Spectrométrie d'absorption atomique
- Spectrophotométrie d'absorption moléculaire
 
14 Bore (10) mg/l B 0,1 10% 20% - Spectrophotométrie d'absorption
moléculaire
- Spectrométrie d'absorption atomique
Matériaux ne conte-nant pas de quantités significa-tives de bore
15 Béryllium mg/l Be          
16 Cobalt mg/l Co          
17 Nickel mg/l Ni          
18 Vanadium mg/l V          
19 Arsenic (10) mg/l As 0,002 (2)
0,01 (5)
20% 20% - Spectrométrie d'absorption atomique
- Spectrométrie d'absorption atomique
- Spectrophotométrie d'absorption
moléculaire
 
20 Cadmium (10) mg/l Cd 0,0002
0,001 (5)
30% 30% - Spectrométrie d'absorption atomique
- Polarographie
 
21 Chrome total (10) mg/l Cr 0,01 20% 30% - Spectrométrie d'absorption atomique
- Spectrophotométrie d'absorption
moléculaire
 
22 Plomb (10) mg/l Pb 0,01 20% 30% - Spectrométrie d'absorption atomique
- Polarographie
 
23 Sélénium (10) mg/l Se 0,005     - Spectrométrie d'absorption atomique  
24 Mercure (10) mg/l Hg 0,0001
0,0001 (5)
30% 30% - Spectrométrie d'absorption atomique
sans flamme (vaporisation à froid)
 
25 Baryum (10) mg/l Ba 0,02 15% 30% - Spectrométrie d'absorption atomique  
26 Cyanure mg/l CN 0,01 20% 30% - Spectrophotométrie d'absorption
moléculaire
 
27 Sulfates mg/l SO4 10 10% 10% - Gravimétrie
- Complexométrie à l'EDTA
- Spectrophotométrie d'absorption
moléculaire
 
28 Chlorures mg/l Cl 10 10% 10% - Titrimétrie (méthode de Mohr)
- Spectrophotométrie d'absorption
moléculaire
 
29 Agents de surface (réagissant au bleu de
méthylène
mg/l
(lauryl Sulfate)
0,05 20%   - Spectrophotométrie d'absorption
moléculaire
 
30 Phosphates mg/l P2O5 0,02 10% 20% - Spectrophotométrie d'absorption
moléculaire
 
31 Phénols
(indice phénols)
mg/l C6H5OH 0,0005
0,001 (6)
0,0005
30%
0,0005
50%
- Spectrophotométrie d'absorption
moléculaire
Méthode à la 4-aminoantipyrine
- Méthode à la paranitraniline
Verre
32 Hydrocarbures dissous ou émulsionnés mg/l 0,01
0,04 (3)
20% 30% - Spectrophotométrie infrarouge après extraction au tetrachlorure de carbone
- Gravimétrie après extraction par éther de pétrole
Verre
33 Carbures aromatiques polycycliques (10) mg/l 0,0004 50% 50% - Mesure de la fluorescence dans UV après chromatographie en couches
minces
- Mesure comparative par rapport à un mélange de 6 substances étalons ayant la même concentration (8)
Verre ou aluminium
34 Pesticides total (parathion, hexa-chlorocyclohexane, dieldrine) (10) mg/l 0,0001 50% 50% - Chromatographie en phase gazeuse ou liquide après extraction par solvants
appropriés et purification
Identification des constituants du
mélange
Détermination quantitative (9)
Verre
35 Demande chimique d’oxygène (DCO) mg/l O2 15 20% 20% - Méthode au bichromate de potassium  
36 Taux de saturation en oxygène dissous % 5 10% 10% - Méthode de Winkler
- Méthode électrochimique
Verre
37 Demande biochimique d’oxygène (DBO5) à 20°C sans nitrification mg/l O2 2 1.5 2 - Détermination de O2 dissous avant et après incubation de 5 jours à 20 + - 1° C et dans l'obscurité. Ajout d'un inhibiteur de nitrification  
38 Azote Kjeldahl (azote de NO2 et NO4 exclus) mg/l N 0,5 0,5 0,5 - Minéralisation, distillation selon la méthode Kjeldahl et détermination de l'ammonium par spectrophotométrie d'absorption moléculaire ou titrimétrie  
39 Ammonium mg/l NH4 0,01 (2)
0,1 (3)
0,03 (2)
10% (3)
0,03 (2)
20% (3)
- Spectrophotométrie d'absorption
moléculaire
 
40 Substances extractibles au chloroforme mg/l (11) - - - Extraction à pH 7 neutre par du chloroforme purifié, évaporation sous vide à température ambiante, pesée du résidu Verre
41 Carbone organique total mg/l C          
42 Carbone organique résiduel après floculation et filtration sur membrane (5*m) mg/l C          
43 Coliformes totaux /100 ml 5 (2)
500 (7)
5 (2)
500 (7)
    - Culture à 37°C sur un milieu solide spécifique approprié à cet effet (tel que gélose lactosée au tergitol, gélose d'Endo, gélose au teepol 0,4%) avec (2) ou sans (7) filtration et dénombrement des colonies. Les échantillons doivent être dilués ou, le cas échéant, concentrés de manière à contenir entre 10 et 100 colonies. Au besoin, identifier par gazéification.
- Méthode de dilution avec fermentation en substrats liquides dans au moins trois tubes dans trois dilutions. Repiquage des tubes positifs sur milieu de confirmation. Dénombrement selon le nombre le plus probable.
Température d'incubation: 37 ± 1°C
Verre
stérilisé
44 Coliformes
fécaux
/100 ml 2 (2)
200 (7)
2 (2)
200 (7)
    - Culture à 44°C sur un milieu solide spécifique approprié à cet effet (tel que gélose lactosée au tergitol, gélose d'Endo, gélose au teepol 0,4% avec (2) ou sans (7) ou sans filtration et dénombrement des colonies. Les échantillons doivent être dilués ou, le cas échéant, concentrés de manière à contenir entre 10 et 100 colonies. Au besoin identifier par
gazéification.
- Méthode de dilution avec fermentation en substrats liquides dans au moins trois tubes. Repiquage des tubes positifs sur milieu de confirmation. Dénombrement selon le nombre le plus probable.
- Température d'incubation: 44 ± 0,5°C.
Verre
stérilisé
45 Streptocoques fécaux /100 ml 2 (2)
200 (7)
2 (2)
200 (7)
    - Culture à 37°C sur un milieu solide spécifique approprié à cet effet (par exemple avec l'acide de sodium) avec (2) ou sans (7) filtration et dénombrement des colonies. Les échantillons doivent être dilués ou, le cas échéant, concentrés de manière à contenir entre 10 et 100 colonies.
- Méthode de dilution en bouillon d'acide de sodium dans au moins trois tubes avec trois dilutions.
Dénombrement selon NPP (le nombre le plus probable) .
Verre
stérilisé
46 Salmonelles(12) 1/5 000 ml
1/1 000 ml
      - Concentration par filtration (sur membrane ou sur filtre approprié) ; inoculation sur milieu de pré-enrichissement. Enrichissement, repiquage sur gélose d'isolement, identification. Verre
stérilisé


 (1) Les échantillons des eaux superficielles prélevés au point d'extraction sont analysés et mesurés après tamisage (tamis à mailles) afin d'éliminer les résidus flottants tels que bois, plastique, etc.
 (2) Pour les eaux de catégorie A1 valeur G.
 (3) Pour les eaux de catégorie A2 et A3.
 (4) Pour les eaux de catégorie A3.
 (5) Pour les eaux de catégorie A1, A2, A3 valeur I.
 (6) Pour les eaux de catégorie A2 valeur I et A3.
 (7) Pour les eaux de catégorie A2 et A3 valeur G.
 (8) Mélange de six substances étalons à prendre en considération et ayant la même concentration: fluoranthène; 3,4-benzofluoranthène; benzo 11, 12-fluoranthène; benzo 3,4-pyrène; 1, 12-benzoperylène; indéno /1,2,3-cd/ pyrène.
 (9) Mélange de trois substances à prendre en considération et ayant la même concentration: parathion, hexachlorocyclohexane, dieldrine.
(10) Si la teneur des échantillons en matières en suspension est élevée au point de nécessiter un traitement préalable spécial de ces échantillons, les valeurs de l'exactitude figurant dans la colonne E pourront exceptionnellement être dépassées et constitueront un objectif. Ces échantillons doivent être traités de façon telle que la plus grande quantité à mesurer participe à l'analyse.
(11) Comme cette méthode n'est pas d'un usage courant dans tous les Etats membres, il n'est pas assuré que la valeur de la limite de détection nécessaire pour le contrôle des valeurs de la directive 75/440/CEE puisse être atteinte.
(12) Absence dans 5000 ml (A1, G) et absence dans 1000 ml (A2, G) .

Annexe II

Fréquence minimale annuelle des échantillonnages et de l'analyse de chaque paramètre, conformément à la directive 75/440/CEE

  A1(*) A2(*) A3(*)
Population I(**) II(**) III(**) I(**) II(**) III(**) I(**) II(**) III(**)
<= 10000 (***) (***) (***) (***) (***) (***) 2 1 (***) (1)
> 10000 -
<= 30000
1 1 (***) 2 1 (***) 3 1 1
> 30000 -
<= 100000
2 1 (***) 4 2 1 6 2 1
> 100000 3 2 (***) 8 4 1 12 4 1

(*) Qualité des eaux superficielles, annexe II de la directive 75/440/CEE.
(**) Classification des paramètres selon la fréquence.
(***) Fréquence à déterminer par les autorités nationales compétentes.
(1) Etant entendu que ces eaux superficielles sont destinées à la production d'eau alimentaire, il est recommandé aux Etats membres de procéder à un échantillonnage annuel au moins des eaux de cette catégorie (A3,III, µ 10000) .

CATEGORIES

I
Paramètres
II
Paramètres
III
Paramètres
1 pH 10 Fer (dissous)  8 Fluorures
2 Coloration 11 Manganèse 14 Bore
3 Matières totales en suspension 12 Cuivre 19 Arsenic
4 Température 13 Zinc 20 Cadmium
5 Conductivité 27 Sulfates 21 Chrome total
6 Odeur 29 Agents de surface 22 Plomb
7 Nitrates 31 Phénols 23 Sélénium
28 Chlorures 38 Azote Kjeldahl 24 Mercure
30 Phosphates 43 Coliformes totaux 25 Baryum
35 Demande chimique d’oxygène (DCO) 44 Coliformes fécaux 26 Cyanures
36 Taux de saturation d’oxygène dissous     32 Hydrocarbures dissous ou émulsionnés
37 Demande biochimique d’oxygène (DBO5)     34 Pesticides - total
39 Ammonium     40 Substances extractibles au chloroforme
        45 Streptocoques fécaux
        46 Salmonelles

 

DATE: 30.10.79
NUMEROTATION CEE: 79/923

DIRECTIVE RELATIVE A LA QUALITE REQUISE DES EAUX CONCHYLICOLES

Directives de modification et d’adaptation:

PARTIES CONTRACTANTES

Communautés européennes

OBJET IMMEDIAT

Cause de pollution:
Bien à protéger/
milieu récepteur:
Produits conchylicoles comestibles pour l'homme
Zone à protéger:
Eaux conchylicoles (eaux et zones désignées par les Etats membres)
Intérêt pour les EIE: Cette directive concerne la fixation de paramètres et de valeurs en fonction des installations techniques. Elle opère une distinction entre valeurs guides et valeurs impératives.

REMARQUES

L'annexe de la directive indique les valeurs correspondant à 12 paramètres (pH, température, coloration, matières en suspension, salinité, substances organohalogénées, différents métaux, etc.) ainsi que les méthodes de mesure et d'analyse à employer.

REFERENCE

Source de données consultée: Droit de l’Environnement des Communautés européennes (DECE, 1988)

INFORMATIONS CONNEXES

  Paramètres G I Méthodes d’analyse de référence Fréquence minimale d’échantillonnage et de mesure
1. pH
unité pH
  7-9 - Electrométrie
La mesure s'effectue in situ en même temps que l'échantillonnage
Trimestrielle
2. Température °C L'écart de température provoqué par un rejet ne doit pas, dans les eaux conchylicoles influencées par ce rejet, excéder de plus de 2°C la température mesurée dans les eaux non influencées   - Thermométrie
La mesure s'effectue in situ en même temps que l'échantillonnage
Trimestrielle
3. Coloration (après filtration)
mg Pt/l
  La couleur de l'eau après filtration, provoquée par un rejet, ne doit pas, dans les eaux conchylicoles influencées par ce rejet, s'écarter de plus de 100 mg Pt/l de la couleur mesurée dans les eaux non influencées - Filtration sur membrane filtrante de 0,45 µm de porosité
Méthode photométrique, aux étalons de l'échelle platine-cobalt
Trimestrielle
4. Matières en suspension
mg/l
  L'accroissement de la teneur en matières en suspension provoqué par un rejet ne doit pas, dans les eaux conchylicoles influencées par ce rejet, excéder de plus de 30% celle mesurée dans les eaux non influencées - Filtration sur membrane filtrante de 0,45 µm de porosité, séchage à 105°C et pesée
- Centrifugation (temps minimal 5 minutes, accélération moyenne 2800 à 3200 g) , séchage à 105° C et pesée
Trimestrielle
5. Salinité o/oo 12 - 38 o/oo - <= 40o/oo
- La variation de la salinité provoquée par un rejet ne doit pas, dans les eaux conchylicoles influencées par ce rejet, excéder de plus de 10% la salinité mesurée dans les eaux non influencées
Conductimétrie Mensuelle
6. Oxygène dissous (% de saturation) >= 80% - >= 70% (valeur moyenne)
- Si une mesure individuelle indique une valeur inférieure à 70%, les mesures sont répétées
- Une mesure individuelle ne peut indiquer une valeur inférieure à 60% que lorsqu'il n'y a pas de conséquences nuisibles pour le développement des peuplements des coquillages
- Méthode de Winkler
- Méthode électrochimique
Mensuelle, avec au moins un échantillon représentatif des faibles teneurs en oxygène se présentant le jour du prélèvement. Toutefois, s'il y a présomption de variations diurnes significatives, au moins deux prélèvements par jour seront effectués
7. Hydrocarbures d’origine pétrolière   Les hydrocarbures ne doivent pas être présents dans l'eau conchylicole en quantité telle:
- qu'ils produisent à la surface de l'eau un film visible et/ou un dépôt sur les coquillages
- qu'ils provoquent des effets nocifs pour les coquillages
Examen visuel Trimestrielle
8. Substances organo-halogénées La limitation de la concentration de chaque substance dans la chair de coquillage doit être telle qu'elle contribue, conformément à l'article 1, à une bonne qualité des produits conchylicoles sur les coquillages et leurs larves La concentration de chaque substance dans l'eau conchylicole ou dans la chair de coquillage ne doit pas dépasser un niveau qui provoque des effets nocifs Chromatographie en phase gazeuse après extraction par solvants appropriés et purification Semestrielle
9. Métaux
Argent Ag
Arsenic As
Cadmium Cd
Chromium Cr
Cuivre Cu
Mercure Hg
Nickel Ni
Plomb Pb
Zinc Zn
mg/l
La limitation de la concentration de chaque substance dans la chair de coquillage doit être telle qu'elle contribue, conformément à l'article 1, à une bonne qualité des produits conchylicoles sur les coquillages et leurs larves La concentration de chaque substance dans l'eau conchylicole ou dans la chair de coquillage ne doit pas dépasser un niveau qui provoque des effets nocifs.
Les effets de synergie de ces métaux doivent être pris en considération
Spectrométrie d'absorption atomique, éventuellement précédée d'une concentration et/ou d'une extraction Semestrielle
10. Coliformes fécaux 100 ml <= 300 dans la chair de coquillage et le liquide intervalvaire (1)   Méthode de dilution avec fermentation en substrats liquides dans au moins trois tubes dans trois dilutions.
Repiquage des tubes positifs sur milieu de confirmation. Dénombrement selon NPP (nombre le plus probable) . Température d'incubation 44 ± 0,5 °C
Trimestrielle
11. Substances influençant le goût du coquillage   Concentration inférieure à celle susceptible de détériorer le goût du coquillage Examen gustatif des coquillages, lorsque la présence d'une telle substance est présumée  
12. Saxitoxine (produite par les dinoflagellés)        

Abréviations: G = Valeur guide
I = Valeur impérative

(1) Toutefois, en attendant l'adoption d'une directive relative à la protection des consommateurs de produits conchylicoles, cette valeur devrait être impérativement respectée dans les eaux où vivent les coquillages directement comestibles par l'homme.

 

DATE: 17.12.79
NUMEROTATION CEE: 80/68

DIRECTIVE DU CONSEIL CONCERNANT LA PROTECTION DES EAUX SOUTERRAINES CONTRE LA POLLUTION CAUSEE PAR CERTAINES SUBSTANCES DANGEREUSES ("DIRECTIVE RELATIVE AUX EAUX SOUTERRAINES")

Directives de modification et d’adaptation:

PARTIES CONTRACTANTES

Communautés européennes

OBJET IMMEDIAT

Cause de pollution:
Bien à protéger/
milieu récepteur:
Eaux souterraines
Zone à protéger:

Intérêt pour les EIE: Les Etats membres prennent des mesures appropriées pour empêcher (liste I) ou limiter (liste II) les rejets de certaines substances dangereuses dans les eaux souterraines (cf. infra) .

REMARQUES

Des mesures concrètes ne sont pas mentionnées. La liste des substances dangereuses correspond pour l'essentiel à la liste de la directive 76/464/CEE relative à la protection du milieu aquatique .

REFERENCE

Source de données consultée: Droit de l’Environnement des Communautés européennes (DECE, 1988)

INFORMATIONS CONNEXES

Liste I:

1. Composés organohalogénés et substances pouvant donner naissance à de tels composés dans le milieu aquatique;
2. Composés organophosphorés;
3. Composés organostanniques;
4. Substances qui possèdent un pouvoir cancérogène, mutagène ou tératogène dans le milieu aquatique ou par l'intermédiaire de celui-ci (1) ;
5. Mercure et composés du mercure;
6. Cadmium et composés du cadmium;
7. Huiles minérales et hydrocarbures;
8. Cyanures.

Liste II:

1. Métalloïdes et métaux suivants, ainsi que leurs composés:

1. zinc
2. cuivre
3. nickel
4. chromium
5. plomb
6. sélénium
7. arsenic
8. antimoine
9. molybdène
10. titane
11. étain
12. baryum
13. béryllium
14. bore
15. uranium
16. vanadium
17. cobalt
18. thallium
19. tellure
20. argent

2. Biocides et leurs dérivés ne figurant pas sur la liste I;
3. Substances ayant un effet nuisible sur la saveur et/ou sur l'odeur des eaux souterraines, ainsi que leurs composés susceptibles de donner naissance à de telles substances dans les eaux et de rendre celles-ci impropres à la consommation humaine;
4. Composés organosiliciés toxiques ou persistants et substances qui peuvent donner naissance à de tels composés dans les eaux, à l'exclusion de ceux qui sont biologiquement inoffensifs ou qui se transforment rapidement dans l'eau en substances inoffensives;
5. Composés inorganiques du phosphore et phosphore élémentaire;
6. Fluorures;
7. Ammoniaque et nitrites.

Continué


Table des matières - Précédente - Suivante