Table des matières
- Précédente - Suivante
DATE: 09.10.79
NUMEROTATION CEE: 79/869
DIRECTIVE DU CONSEIL RELATIVE AUX METHODES DE MESURE ET A LA FREQUENCE DES ECHANTILLONNAGES ET DE L'ANALYSE DES EAUX SUPERFICIELLES DESTINEES A LA PRODUCTION D'EAU DE CONSOMMATION HUMAINE DANS LES ETATS MEMBRES
Directives de modification et dadaptation:
PARTIES CONTRACTANTES
Communautés européennes
OBJET IMMEDIAT
Cause de pollution:
Bien à protéger/
milieu récepteur: Eaux superficielles, eau potable
Zone à protéger:
Intérêt pour les EIE: La présente directive définit
les méthodes de mesure de référence et d'analyse à appliquer
pour la détermination des 46 paramètres spécifiés dans la
directive 75/440/CEE.
REMARQUES
La directive 75/440/CEE fixe en fonction de 46 paramètres les normes de qualité applicables aux eaux superficielles destinées à la production d'eau alimentaire.
REFERENCE
Source de données consultée: Droit de lEnvironnement des Communautés européennes (DECE, 1988)
INFORMATIONS CONNEXES
Annexe i
Methodes de mesure de reference en vue de la determination des valeurs I et/ou G des parametres de la directive 75/440/CEE
(A) | (B) | (C) | (D) | (E) | (F) | (G) | |
Paramètres | Limite de détection | Précision + - |
Exac-titude + - |
Méthode de mesure de référence (1) | Matériaux recomman-dés pour le récipient | ||
1 | pH value | Unité pH | - | 0,1 | 0,2 | - Electrométrie La mesure s'effectue immédiatement in situ en même temps que l'échantillonnage sans traitement préalable de l'échantillon |
|
2 | Coloration (après filtration simple) | mg Pt/l | 5 | 19% | 20% | - Filtration sur membrane de
fibres de verre Méthode photométrique, aux étalons de l'échelle platine-cobalt |
|
3 | Matières totales en suspension | mg/l | - | 5% | 10% | - Filtration sur membrane
filtrante (0,45 µm) , Séchage à 105°C et pesée - Centrifugation (au moins 5 mn, accélération moyenne 2800 à 3200 g) , séchage à 105°C et pesée |
|
4 | Température | °C | - | 0,5 | 1 | - Thermométrie La mesure s'effectue in situ en même temps que l'échantillonnage sans traitement préalable de l'échantillon |
|
5 | Conductivité à 20°C | *S/cm | - | 5% | 10% | - Electrométrie | |
6 | Odeur | Facteur de dilu-tion à 25°C | - | - | - | - Par dilutions successives | Verre |
7 | Nitrates | mg/l NO3 | 2 | 10% | 20% | - Spectrophotométrie d'absorption moléculaire | |
8 | Fluorures | mg/l F | 0,05 | 10% | 20% | - Spectrophotométrie
d'absorption moléculaire, si nécessaire après
distillation - Electrodes ioniques spécifiques |
|
9 | Chlore organique total extractible | mg/l Cl | |||||
10 | Fer (dissous) | mg/l Fe | 0,02 | 10% | 20% | - Spectrométrie
d'absorption atomique après filtration sur membrane
filtrante (0,45 µm) Spectrophotométrie d'absorption moléculaire après filtration sur membrane filtrante (0,45 µm) |
|
11 | Manganèse | mg/l Mn | 0,01 (2) 0,02 (3) |
10% 10% |
20% 20% |
- Spectrométrie
d'absorption atomique - Spectrométrie d'absorption atomique - Spectrophotométrie d'absorption moléculaire |
|
12 | Cuivre (10) | mg/l Cu | 0,005 0,02 (4) |
10% 10% |
20% 20% |
- Spectrométrie
d'absorption atomique Polarographie - Spectrométrie d'absorption atomique - Spectrophotométrie d'absorption moléculaire Polarographie |
|
13 | Zinc (10) | mg/l Zn | 0,01 (2) 0,02 |
10% 10% |
20% 20% |
- Spectrométrie
d'absorption atomique - Spectrométrie d'absorption atomique - Spectrophotométrie d'absorption moléculaire |
|
14 | Bore (10) | mg/l B | 0,1 | 10% | 20% | - Spectrophotométrie
d'absorption moléculaire - Spectrométrie d'absorption atomique |
Matériaux ne conte-nant pas de quantités significa-tives de bore |
15 | Béryllium | mg/l Be | |||||
16 | Cobalt | mg/l Co | |||||
17 | Nickel | mg/l Ni | |||||
18 | Vanadium | mg/l V | |||||
19 | Arsenic (10) | mg/l As | 0,002 (2) 0,01 (5) |
20% | 20% | - Spectrométrie
d'absorption atomique - Spectrométrie d'absorption atomique - Spectrophotométrie d'absorption moléculaire |
|
20 | Cadmium (10) | mg/l Cd | 0,0002 0,001 (5) |
30% | 30% | - Spectrométrie
d'absorption atomique - Polarographie |
|
21 | Chrome total (10) | mg/l Cr | 0,01 | 20% | 30% | - Spectrométrie
d'absorption atomique - Spectrophotométrie d'absorption moléculaire |
|
22 | Plomb (10) | mg/l Pb | 0,01 | 20% | 30% | - Spectrométrie
d'absorption atomique - Polarographie |
|
23 | Sélénium (10) | mg/l Se | 0,005 | - Spectrométrie d'absorption atomique | |||
24 | Mercure (10) | mg/l Hg | 0,0001 0,0001 (5) |
30% | 30% | - Spectrométrie
d'absorption atomique sans flamme (vaporisation à froid) |
|
25 | Baryum (10) | mg/l Ba | 0,02 | 15% | 30% | - Spectrométrie d'absorption atomique | |
26 | Cyanure | mg/l CN | 0,01 | 20% | 30% | - Spectrophotométrie
d'absorption moléculaire |
|
27 | Sulfates | mg/l SO4 | 10 | 10% | 10% | - Gravimétrie - Complexométrie à l'EDTA - Spectrophotométrie d'absorption moléculaire |
|
28 | Chlorures | mg/l Cl | 10 | 10% | 10% | - Titrimétrie (méthode de
Mohr) - Spectrophotométrie d'absorption moléculaire |
|
29 | Agents de surface
(réagissant au bleu de méthylène |
mg/l (lauryl Sulfate) |
0,05 | 20% | - Spectrophotométrie
d'absorption moléculaire |
||
30 | Phosphates | mg/l P2O5 | 0,02 | 10% | 20% | - Spectrophotométrie
d'absorption moléculaire |
|
31 | Phénols (indice phénols) |
mg/l C6H5OH | 0,0005 0,001 (6) |
0,0005 30% |
0,0005 50% |
- Spectrophotométrie
d'absorption moléculaire Méthode à la 4-aminoantipyrine - Méthode à la paranitraniline |
Verre |
32 | Hydrocarbures dissous ou émulsionnés | mg/l | 0,01 0,04 (3) |
20% | 30% | - Spectrophotométrie
infrarouge après extraction au tetrachlorure de carbone - Gravimétrie après extraction par éther de pétrole |
Verre |
33 | Carbures aromatiques polycycliques (10) | mg/l | 0,0004 | 50% | 50% | - Mesure de la fluorescence
dans UV après chromatographie en couches minces - Mesure comparative par rapport à un mélange de 6 substances étalons ayant la même concentration (8) |
Verre ou aluminium |
34 | Pesticides total (parathion, hexa-chlorocyclohexane, dieldrine) (10) | mg/l | 0,0001 | 50% | 50% | - Chromatographie en phase
gazeuse ou liquide après extraction par solvants appropriés et purification Identification des constituants du mélange Détermination quantitative (9) |
Verre |
35 | Demande chimique doxygène (DCO) | mg/l O2 | 15 | 20% | 20% | - Méthode au bichromate de potassium | |
36 | Taux de saturation en oxygène dissous | % | 5 | 10% | 10% | - Méthode de Winkler - Méthode électrochimique |
Verre |
37 | Demande biochimique doxygène (DBO5) à 20°C sans nitrification | mg/l O2 | 2 | 1.5 | 2 | - Détermination de O2 dissous avant et après incubation de 5 jours à 20 + - 1° C et dans l'obscurité. Ajout d'un inhibiteur de nitrification | |
38 | Azote Kjeldahl (azote de NO2 et NO4 exclus) | mg/l N | 0,5 | 0,5 | 0,5 | - Minéralisation, distillation selon la méthode Kjeldahl et détermination de l'ammonium par spectrophotométrie d'absorption moléculaire ou titrimétrie | |
39 | Ammonium | mg/l NH4 | 0,01 (2) 0,1 (3) |
0,03 (2) 10% (3) |
0,03 (2) 20% (3) |
- Spectrophotométrie
d'absorption moléculaire |
|
40 | Substances extractibles au chloroforme | mg/l | (11) | - | - | - Extraction à pH 7 neutre par du chloroforme purifié, évaporation sous vide à température ambiante, pesée du résidu | Verre |
41 | Carbone organique total | mg/l C | |||||
42 | Carbone organique résiduel après floculation et filtration sur membrane (5*m) | mg/l C | |||||
43 | Coliformes totaux | /100 ml | 5 (2) 500 (7) 5 (2) 500 (7) |
- Culture à 37°C sur un
milieu solide spécifique approprié à cet effet (tel
que gélose lactosée au tergitol, gélose d'Endo,
gélose au teepol 0,4%) avec (2) ou sans (7) filtration
et dénombrement des colonies. Les échantillons doivent
être dilués ou, le cas échéant, concentrés de
manière à contenir entre 10 et 100 colonies. Au besoin,
identifier par gazéification. - Méthode de dilution avec fermentation en substrats liquides dans au moins trois tubes dans trois dilutions. Repiquage des tubes positifs sur milieu de confirmation. Dénombrement selon le nombre le plus probable. Température d'incubation: 37 ± 1°C |
Verre stérilisé |
||
44 | Coliformes fécaux |
/100 ml | 2 (2) 200 (7) 2 (2) 200 (7) |
- Culture à 44°C sur un
milieu solide spécifique approprié à cet effet (tel
que gélose lactosée au tergitol, gélose d'Endo,
gélose au teepol 0,4% avec (2) ou sans (7) ou sans
filtration et dénombrement des colonies. Les
échantillons doivent être dilués ou, le cas échéant,
concentrés de manière à contenir entre 10 et 100
colonies. Au besoin identifier par gazéification. - Méthode de dilution avec fermentation en substrats liquides dans au moins trois tubes. Repiquage des tubes positifs sur milieu de confirmation. Dénombrement selon le nombre le plus probable. - Température d'incubation: 44 ± 0,5°C. |
Verre stérilisé |
||
45 | Streptocoques fécaux | /100 ml | 2 (2) 200 (7) 2 (2) 200 (7) |
- Culture à 37°C sur un
milieu solide spécifique approprié à cet effet (par
exemple avec l'acide de sodium) avec (2) ou sans (7)
filtration et dénombrement des colonies. Les
échantillons doivent être dilués ou, le cas échéant,
concentrés de manière à contenir entre 10 et 100
colonies. - Méthode de dilution en bouillon d'acide de sodium dans au moins trois tubes avec trois dilutions. Dénombrement selon NPP (le nombre le plus probable) . |
Verre stérilisé |
||
46 | Salmonelles(12) | 1/5 000 ml 1/1 000 ml |
- Concentration par filtration (sur membrane ou sur filtre approprié) ; inoculation sur milieu de pré-enrichissement. Enrichissement, repiquage sur gélose d'isolement, identification. | Verre stérilisé |
(1) Les échantillons des eaux superficielles prélevés au
point d'extraction sont analysés et mesurés après tamisage
(tamis à mailles) afin d'éliminer les résidus flottants tels
que bois, plastique, etc.
(2) Pour les eaux de catégorie A1 valeur G.
(3) Pour les eaux de catégorie A2 et A3.
(4) Pour les eaux de catégorie A3.
(5) Pour les eaux de catégorie A1, A2, A3 valeur I.
(6) Pour les eaux de catégorie A2 valeur I et A3.
(7) Pour les eaux de catégorie A2 et A3 valeur G.
(8) Mélange de six substances étalons à prendre en
considération et ayant la même concentration: fluoranthène;
3,4-benzofluoranthène; benzo 11, 12-fluoranthène; benzo
3,4-pyrène; 1, 12-benzoperylène; indéno /1,2,3-cd/ pyrène.
(9) Mélange de trois substances à prendre en
considération et ayant la même concentration: parathion,
hexachlorocyclohexane, dieldrine.
(10) Si la teneur des échantillons en matières en suspension
est élevée au point de nécessiter un traitement préalable
spécial de ces échantillons, les valeurs de l'exactitude
figurant dans la colonne E pourront exceptionnellement être
dépassées et constitueront un objectif. Ces échantillons
doivent être traités de façon telle que la plus grande
quantité à mesurer participe à l'analyse.
(11) Comme cette méthode n'est pas d'un usage courant dans tous
les Etats membres, il n'est pas assuré que la valeur de la
limite de détection nécessaire pour le contrôle des valeurs de
la directive 75/440/CEE puisse être atteinte.
(12) Absence dans 5000 ml (A1, G) et absence dans 1000 ml (A2, G)
.
Annexe II
Fréquence minimale annuelle des échantillonnages et de l'analyse de chaque paramètre, conformément à la directive 75/440/CEE
A1(*) | A2(*) | A3(*) | |||||||||||
Population | I(**) | II(**) | III(**) | I(**) | II(**) | III(**) | I(**) | II(**) | III(**) | ||||
<= 10000 | (***) | (***) | (***) | (***) | (***) | (***) | 2 | 1 | (***) (1) | ||||
> 10000 - <= 30000 |
1 | 1 | (***) | 2 | 1 | (***) | 3 | 1 | 1 | ||||
> 30000 - <= 100000 |
2 | 1 | (***) | 4 | 2 | 1 | 6 | 2 | 1 | ||||
> 100000 | 3 | 2 | (***) | 8 | 4 | 1 | 12 | 4 | 1 |
(*) Qualité des eaux superficielles,
annexe II de la directive 75/440/CEE.
(**) Classification des paramètres selon
la fréquence.
(***) Fréquence à déterminer par les
autorités nationales compétentes.
(1) Etant entendu que ces eaux superficielles sont
destinées à la production d'eau alimentaire, il est recommandé
aux Etats membres de procéder à un échantillonnage annuel au
moins des eaux de cette catégorie (A3,III, µ 10000) .
CATEGORIES
I Paramètres |
II Paramètres |
III Paramètres |
|||||
1 | pH | 10 | Fer (dissous) | 8 | Fluorures | ||
2 | Coloration | 11 | Manganèse | 14 | Bore | ||
3 | Matières totales en suspension | 12 | Cuivre | 19 | Arsenic | ||
4 | Température | 13 | Zinc | 20 | Cadmium | ||
5 | Conductivité | 27 | Sulfates | 21 | Chrome total | ||
6 | Odeur | 29 | Agents de surface | 22 | Plomb | ||
7 | Nitrates | 31 | Phénols | 23 | Sélénium | ||
28 | Chlorures | 38 | Azote Kjeldahl | 24 | Mercure | ||
30 | Phosphates | 43 | Coliformes totaux | 25 | Baryum | ||
35 | Demande chimique doxygène (DCO) | 44 | Coliformes fécaux | 26 | Cyanures | ||
36 | Taux de saturation doxygène dissous | 32 | Hydrocarbures dissous ou émulsionnés | ||||
37 | Demande biochimique doxygène (DBO5) | 34 | Pesticides - total | ||||
39 | Ammonium | 40 | Substances extractibles au chloroforme | ||||
45 | Streptocoques fécaux | ||||||
46 | Salmonelles |
DATE: 30.10.79
NUMEROTATION CEE: 79/923
DIRECTIVE RELATIVE A LA QUALITE REQUISE DES EAUX CONCHYLICOLES
Directives de modification et dadaptation:
PARTIES CONTRACTANTES
Communautés européennes
OBJET IMMEDIAT
Cause de pollution:
Bien à protéger/
milieu récepteur: Produits conchylicoles comestibles pour
l'homme
Zone à protéger: Eaux conchylicoles (eaux et zones
désignées par les Etats membres)
Intérêt pour les EIE: Cette directive concerne la
fixation de paramètres et de valeurs en fonction des
installations techniques. Elle opère une distinction entre
valeurs guides et valeurs impératives.
REMARQUES
L'annexe de la directive indique les valeurs correspondant à 12 paramètres (pH, température, coloration, matières en suspension, salinité, substances organohalogénées, différents métaux, etc.) ainsi que les méthodes de mesure et d'analyse à employer.
REFERENCE
Source de données consultée: Droit de lEnvironnement des Communautés européennes (DECE, 1988)
INFORMATIONS CONNEXES
Paramètres | G | I | Méthodes danalyse de référence | Fréquence minimale déchantillonnage et de mesure | ||||||
1. | pH unité pH |
7-9 | - Electrométrie La mesure s'effectue in situ en même temps que l'échantillonnage |
Trimestrielle | ||||||
2. | Température °C | L'écart de température provoqué par un rejet ne doit pas, dans les eaux conchylicoles influencées par ce rejet, excéder de plus de 2°C la température mesurée dans les eaux non influencées | - Thermométrie La mesure s'effectue in situ en même temps que l'échantillonnage |
Trimestrielle | ||||||
3. | Coloration
(après filtration) mg Pt/l |
La couleur de l'eau après filtration, provoquée par un rejet, ne doit pas, dans les eaux conchylicoles influencées par ce rejet, s'écarter de plus de 100 mg Pt/l de la couleur mesurée dans les eaux non influencées | - Filtration sur
membrane filtrante de 0,45 µm de porosité Méthode photométrique, aux étalons de l'échelle platine-cobalt |
Trimestrielle | ||||||
4. | Matières en
suspension mg/l |
L'accroissement de la teneur en matières en suspension provoqué par un rejet ne doit pas, dans les eaux conchylicoles influencées par ce rejet, excéder de plus de 30% celle mesurée dans les eaux non influencées | - Filtration sur
membrane filtrante de 0,45 µm de porosité, séchage à
105°C et pesée - Centrifugation (temps minimal 5 minutes, accélération moyenne 2800 à 3200 g) , séchage à 105° C et pesée |
Trimestrielle | ||||||
5. | Salinité o/oo | 12 - 38 o/oo | - <= 40o/oo - La variation de la salinité provoquée par un rejet ne doit pas, dans les eaux conchylicoles influencées par ce rejet, excéder de plus de 10% la salinité mesurée dans les eaux non influencées |
Conductimétrie | Mensuelle | |||||
6. | Oxygène dissous (% de saturation) | >= 80% | - >= 70%
(valeur moyenne) - Si une mesure individuelle indique une valeur inférieure à 70%, les mesures sont répétées - Une mesure individuelle ne peut indiquer une valeur inférieure à 60% que lorsqu'il n'y a pas de conséquences nuisibles pour le développement des peuplements des coquillages |
- Méthode de
Winkler - Méthode électrochimique |
Mensuelle, avec au moins un échantillon représentatif des faibles teneurs en oxygène se présentant le jour du prélèvement. Toutefois, s'il y a présomption de variations diurnes significatives, au moins deux prélèvements par jour seront effectués | |||||
7. | Hydrocarbures dorigine pétrolière | Les
hydrocarbures ne doivent pas être présents dans l'eau
conchylicole en quantité telle: - qu'ils produisent à la surface de l'eau un film visible et/ou un dépôt sur les coquillages - qu'ils provoquent des effets nocifs pour les coquillages |
Examen visuel | Trimestrielle | ||||||
8. | Substances organo-halogénées | La limitation de la concentration de chaque substance dans la chair de coquillage doit être telle qu'elle contribue, conformément à l'article 1, à une bonne qualité des produits conchylicoles sur les coquillages et leurs larves | La concentration de chaque substance dans l'eau conchylicole ou dans la chair de coquillage ne doit pas dépasser un niveau qui provoque des effets nocifs | Chromatographie en phase gazeuse après extraction par solvants appropriés et purification | Semestrielle | |||||
9. | Métaux Argent Ag Arsenic As Cadmium Cd Chromium Cr Cuivre Cu Mercure Hg Nickel Ni Plomb Pb Zinc Zn mg/l |
La limitation de la concentration de chaque substance dans la chair de coquillage doit être telle qu'elle contribue, conformément à l'article 1, à une bonne qualité des produits conchylicoles sur les coquillages et leurs larves | La concentration de chaque substance dans
l'eau conchylicole ou dans la chair de coquillage ne doit
pas dépasser un niveau qui provoque des effets nocifs. Les effets de synergie de ces métaux doivent être pris en considération |
Spectrométrie d'absorption atomique, éventuellement précédée d'une concentration et/ou d'une extraction | Semestrielle | |||||
10. | Coliformes fécaux 100 ml | <= 300 dans la chair de coquillage et le liquide intervalvaire (1) | Méthode de dilution avec fermentation en
substrats liquides dans au moins trois tubes dans trois
dilutions. Repiquage des tubes positifs sur milieu de confirmation. Dénombrement selon NPP (nombre le plus probable) . Température d'incubation 44 ± 0,5 °C |
Trimestrielle | ||||||
11. | Substances influençant le goût du coquillage | Concentration inférieure à celle susceptible de détériorer le goût du coquillage | Examen gustatif des coquillages, lorsque la présence d'une telle substance est présumée | |||||||
12. | Saxitoxine (produite par les dinoflagellés) |
Abréviations: G = Valeur guide
I = Valeur impérative
(1) Toutefois, en attendant l'adoption d'une directive relative à la protection des consommateurs de produits conchylicoles, cette valeur devrait être impérativement respectée dans les eaux où vivent les coquillages directement comestibles par l'homme.
DATE: 17.12.79
NUMEROTATION CEE: 80/68
DIRECTIVE DU CONSEIL CONCERNANT LA PROTECTION DES EAUX SOUTERRAINES CONTRE LA POLLUTION CAUSEE PAR CERTAINES SUBSTANCES DANGEREUSES ("DIRECTIVE RELATIVE AUX EAUX SOUTERRAINES")
Directives de modification et dadaptation:
PARTIES CONTRACTANTES
Communautés européennes
OBJET IMMEDIAT
Cause de pollution:
Bien à protéger/
milieu récepteur: Eaux souterraines
Zone à protéger:
Intérêt pour les EIE: Les Etats membres prennent des
mesures appropriées pour empêcher (liste I) ou limiter (liste
II) les rejets de certaines substances dangereuses dans les eaux
souterraines (cf. infra) .
REMARQUES
Des mesures concrètes ne sont pas mentionnées. La liste des substances dangereuses correspond pour l'essentiel à la liste de la directive 76/464/CEE relative à la protection du milieu aquatique .
REFERENCE
Source de données consultée: Droit de lEnvironnement des Communautés européennes (DECE, 1988)
INFORMATIONS CONNEXES
Liste I:
1. Composés organohalogénés et substances pouvant donner
naissance à de tels composés dans le milieu aquatique;
2. Composés organophosphorés;
3. Composés organostanniques;
4. Substances qui possèdent un pouvoir cancérogène, mutagène
ou tératogène dans le milieu aquatique ou par l'intermédiaire
de celui-ci (1) ;
5. Mercure et composés du mercure;
6. Cadmium et composés du cadmium;
7. Huiles minérales et hydrocarbures;
8. Cyanures.
Liste II:
1. Métalloïdes et métaux suivants, ainsi que leurs composés:
1. zinc
2. cuivre
3. nickel
4. chromium
5. plomb
6. sélénium
7. arsenic
8. antimoine
9. molybdène
10. titane
11. étain
12. baryum
13. béryllium
14. bore
15. uranium
16. vanadium
17. cobalt
18. thallium
19. tellure
20. argent
2. Biocides et leurs dérivés ne figurant pas sur la liste I;
3. Substances ayant un effet nuisible sur la saveur et/ou sur
l'odeur des eaux souterraines, ainsi que leurs composés
susceptibles de donner naissance à de telles substances dans les
eaux et de rendre celles-ci impropres à la consommation humaine;
4. Composés organosiliciés toxiques ou persistants et
substances qui peuvent donner naissance à de tels composés dans
les eaux, à l'exclusion de ceux qui sont biologiquement
inoffensifs ou qui se transforment rapidement dans l'eau en
substances inoffensives;
5. Composés inorganiques du phosphore et phosphore
élémentaire;
6. Fluorures;
7. Ammoniaque et nitrites.